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您现在的位置: 医学全在线 > 理论教学 > 基础学科 > 人体寄生虫学 > 正文:寄生虫学实验诊断技术
    

寄生虫学实验诊断技术:病原检查及免疫论断及新技术应用

 

  (二)血液检查

  血液检查是诊断疟疾丝虫病的基本方法。涂制血膜用的载玻片用前需经洗涤液处理,自来水、蒸馏水冲洗,在95%酒精中浸泡,擦干或烤干后使用。

  洗涤液配制:常用玻璃器皿的洗涤液为铬酸洗液,含工业浓硫酸100ml,重铬酸钾80g,水1000ml。先用冷水将重铬酸钾溶化,然后徐徐加入浓硫酸,同时用玻璃棒搅拌。

  1.检查疟原虫

  ⑴取血与涂片:用75%酒精棉球消毒耳垂,待干后用左手拇指与食指捏着耳垂下方,并使耳垂下侧方皮肤绷紧,右手持取血针、刺破皮肤,挤出血滴。薄、厚血膜可涂制在同一张玻片上(图21-7)。

图21-7 薄厚血膜制作步骤

  1)薄血膜制片:在载玻片1/3与2/3交界处蘸血一小滴,以一端缘光滑的载片为推片,将推片的一端置于血滴之前,待血液沿推片端缘扩散后,自右向左推成薄血膜。操作时两载片间的角度为30~45℃,推动速度适宜。理想的薄血膜,应是一层均匀分布的血细胞,血细胞间无空隙且涂血膜末端呈扫帚状。

  2)厚血膜制片:载玻片的另一端(右)1/3处蘸血一小滴(约10mm³),以推片的一角,将血滴自内向外作螺旋形摊开,使之成为直径约0.8~1cm,厚薄均匀的厚血膜。厚血膜为多层血细胞的重叠,约等于20倍薄血膜的厚度。

  ⑵固定与染色:血片必须充分晾干,否则染色时容易脱落。固定时用小玻棒蘸甲醇或无水酒精在薄血膜上轻轻抹过。如薄、厚血膜在同一玻片上,须注意切勿将固定液带到厚血膜上,因厚血膜固定之前必须先进行溶血。可用滴管滴水于厚血膜上,待血膜呈灰白色时,将水倒去,晾干。在稀释各种染液和冲洗血膜时,如用缓冲液则染色效果更佳。缓冲液的配制如下:

  磷酸氢二钠液:磷酸氢二钠(Na2HPO4)无水0.464g或Na2HPO4· 2H2O 11.867g或Na2HPO4 · 7H2O17.872g或Na2HPO4· 2H2O23.877g,蒸馏水1000ml。

  M/15磷酸二氢钾液:磷酸二氢钾(Na2HPO4)9.073g,蒸馏水1000ml。

  使用时将上述原液按下页表配成不同的pH缓冲液:

pH M/15KH2PO4(ml) M/15Na2HPO4(ml) 蒸馏水(ml)
6.8 4.9 5.1 90
7.0 6.3 3.7 90
7.2 7.3 2.7 90

  染色时临时配成pH7.0或7.2的缓冲液。

  常用的染色剂有姬氏染剂(Giemsa's stain)、瑞氏染剂(Wright's  stain)。

  1)Giemsa染色法:此法染色效果良好,血膜褪色较慢,保存时间较久,但染色需时较长。

  染液配制:姬氏染剂粉1g,甲醇50ml,纯甘油50ml。将姬氏染粉置于研钵中(最好用玛瑙研钵),加小量甘油充分研磨,加甘油再磨,直至50ml甘油加完为止,倒入棕色玻瓶中。然后分几次用少量甲醇冲洗钵中的甘油染粉,倒入玻瓶,直至50ml甲醇用完为止,塞紧瓶塞,充分摇匀,置65℃温箱内24小时或室温内一周过滤。医学.全在.线www.med126.com

  染色方法:用pH7.0~7.2的缓冲液,将姬氏液稀释;比例约为15~20份缓冲液加1份姬氏染液。用蜡笔划出染色范围,将稀释的姬氏染液滴于已固定的薄、厚血膜上,染色半小时(室温),再用上述缓冲液冲洗。血片晾干后镜检。

  2)快速姬色染色法:姬氏染液1ml,加缓冲液5ml,如前法染色5分钟后用缓冲液冲洗,晾干后镜检。

  3)Wright染色法:此法操作简便,适用于临床诊断,但甲醇蒸发甚快,掌握不当时易在血片上发生染液沉淀,并较易褪色,保存时间不长。多用于临时性检验。

  染液配制:瑞氏染剂粉0.1~0.5g,甲醇97ml,甘油3ml。将瑞氏染剂加入甘油中充分研磨,然后加入少量甲醇,研磨后倒入瓶内,再分几次用甲醇冲洗研钵中的甘油溶液,倒入瓶内,直至用完为止,摇匀,24小时后过滤待用。一般1、2周后再过滤。

  染色方法:瑞氏染液含甲醇,薄血膜不需先固定;而厚血膜则需先经溶血,待血膜干后才能染色。染色前先将溶过血的厚血膜和薄血膜一起用蜡笔划好染色范围,以防滴加染液时四溢。滴染液使覆盖全部厚、薄血膜上,30秒至1分钟后用滴管加等量的蒸馏水,轻轻摇动载玻片,使蒸馏水和染液混合均匀,此时出现一层灿铜色浮膜(染色),3~5分钟后用水缓慢地从玻片一端冲洗(注意勿先倒去染液或直对血膜冲洗),晾干后镜检。

  2.检查微丝蚴

  ⑴新鲜血片检查:晚间9时至次晨2时取血1滴滴于载玻片上,加盖片,在低倍镜下观察,发现蛇形游动的幼虫后,仍须作染色检查,以确定虫种。

  ⑵厚血膜检查:厚血膜的制作、溶血、固定与姬氏液染色同疟原虫。但需取血3滴,也可用Delafieid苏木素染色法染色。该染液的配制方法如下:

  苏木素1g溶于纯酒精或95%酒精10ml中,加饱和硫酸铝铵(8%~10%)100ml,倒入棕色瓶中,瓶口用两层纱布扎紧,在阳光下氧化2~4周,过滤,加甘油25ml和甲醇25ml,用时稀释10倍左右。

  已溶血、固定的厚血膜在德氏苏木素液内染10~15分钟,在1%酸酒精中分色1~2分钟,蒸馏水洗涤1~5分钟,至血膜呈蓝色,再用1%伊红染色0.5~1分钟,以水洗涤2~5分钟,晾干后镜检。

  ⑶活微丝蚴浓集法:在离心管内装蒸馏水半管,加血液10~12滴,再加生理盐水混匀,离心沉淀3分钟,取沉渣检查。或取静脉血1ml,置于盛有3.8%枸橼酸钠0.1ml的试管中,摇匀,加水9ml,俟红细胞溶化后,离心(3000rpm/min)2分钟,倒去上液,加水再离心,取沉渣镜检。

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