| 1．健康动物的选择。 2．性别辨认。 3.动物称重、编号和分组； (1)称重；称量大、小鼠体重的秤，其感应量需在0.1g以下，并经过校正。称量时注意轻抓轻放动物，避免激惹，等动物安静后记录体重读数，以g表示。 (www.lindalemus.com/wsj/2)编号：以染色法编号。用苦味醒酒精饱和液为染料。以黄色为个位数号码，红色为十位数号码。一股以头部为1号，按顺时针依次右前肢为2号，右腰为2号，右后肢为4号，尾根部为5号，右后肢为s号，左腰为7号，左前肢为8号，后背为9号，10号为在头部染红色标记，11号在右前肢染红色和黄色标记各一，依次类推。 (3)随机分组。 4．剂量设置 由指导教师根据受试物类别，选择LD50计算方法设计剂量组。 5．受试物的配制 (1)量取受试物：固体化学物采用称量法，液体化学物可用称量法或吸量法 1)称量法：将受试物放入已知重量的容器内称重。加溶剂溶解或稀释，倾入刻度容器（如容量瓶)内，混匀，再加溶剂至刻度。算出浓度(rog／mi)备用。 2)吸量法：依设计剂量计算出应吸取液态受试物的容积，加入容量瓶中，用溶剂加至 刻度。计算公式为： X＝A*V/d*1000 式中；x：应吸取受试物的容积(mD； A：设计要求的受试物浓度(mg／ml： V：容量瓶容积(m1)； d；受试化学物比重。 (2)受试物的稀释 1)等浓度稀释法：将受试化学物配成一种浓度，此时各剂量组的实验动物将给予不同体积的受试物。例如受试物配成1000mg／lOml的溶液，五个剂量组的剂量分别为100、200、400、800、1600mg／kg，则各剂量组动物将依次给予1.0mi／kg、2．Omi／kg直至最高剂量组的16mi／kg。 2)等容量稀释法：按照事先设计的剂量分别稀释配制为几种不同浓度的受试物溶液，各个剂量组的动物均给予相同单位体重体积的受试化学物。如上例的情况，将受试物别配成l00mg／10ml、200mg／l0ml、400mg／10ml、800mg／10ml、1600mg／10ml 5个浓度，溶液，各剂量组动物给予受试物的体积均为l0ml／kg。 6、灌胃操作 小鼠、大鼠及豚鼠灌冒法：采用专用小鼠和大鼠灌胃针，也可自制。将头的16号注射针(适用于小鼠)或20~24号腰穿针(适用于大鼠、豚鼠)(注意事先可用锡在针尖周围焊一圆头，使其不易损伤动物的消化遭)安装在适当容积的注射器上，吸所需的受试物溶液，左手抓住动物双耳后至背部的皮肤(小鼠仅抓住耳后、颈部的皮肤，无名指、小手指和大鱼际肌将其尾根部压紧)，将动物固定成垂直体位，腹部面向操作。注意使动物的上消化道固定成一直线。右手持注射器，将针头由动物口腔侧插入，避牙齿，沿咽后壁缓缓滑人食管。若遇阻力，可轻轻上下滑动探索，一旦感觉阻力消失，即深人至胃部。如遇动物挣扎，应停止进针或将针拔出，千万不能强行插入，以免穿破食，甚至误入气管，导致动物立即死亡。 一般进针深度小鼠2.5～4cm，大鼠或豚鼠4～6cm。为了验明是否已正确地插入胃部，可轻轻回抽注射器，如无气泡抽出，表明已插入胃中；如有大量气泡，则提示误插气管，应抽出重插。随后将受试物溶液注入。灌胃容量小鼠通常为o．2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠l～5ml。 7．中毒体征和动物死亡情况观察 染毒后注意观察毒性体征和死亡情况。高剂量组动物的死亡常很快发生，染毒后应即刻密切观察。观察和记录中毒体征及出现的时间、死亡数量和时间及死亡前的特征。根据观察情况分析中毒特点和毒作用靶器官． LD50计算：根据受试物的种类由指导教师事先确定采用何种方法(改进寇氏法、霍恩法等)进行计算，并在试验前设计剂量分组和每组动物数。选择适宜的方法求出LD50及95％的可信限范围．如毒性反应存在性别差异，应分别求出不同性别动物的LD50值。 | 
