1.制备坐骨神经-腓神经标本(sciatic nerve- peroneal nerve specimen) (1)破坏脑、脊髓 取蛙一只,用自来水冲洗干净。左手握蛙,用食指下压头部前端,拇指按压背部,使头前俯。右手持探针由前端沿正中线向尾端触划,触到凹陷处即枕骨大孔所在部位(图 1-1)将探针由此垂直刺入枕骨大孔,再将针折向前方插入颅腔并左右捣毁脑组织,然后将针退出至刺入点皮下,针尖倒向后方,通过椎管捣毁脊髓。待四肢肌肉松弛,呼吸消失,表示脑和脊髓完全破坏,否则按上法重新捣毁。 图 1-1 破坏蛙脑、脊髓的方法 (2) 去除躯干上部和内脏 在骶髂关节水平上0.5cm~1cm处剪断脊柱,左手握住脊柱下方断端,使头与内脏自然下垂,右手持粗剪刀,沿脊柱两侧剪除一切内脏及头胸部,留下后肢、骶骨、脊柱以及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经(图 1-2)。
图 1-2 剪除躯干上部和内脏 (3) 剥皮 左手握紧脊柱断端,右手捏住断端边缘皮肤,用力向下剥掉全部后肢的皮肤(图 1-3)。把标本放在盛有任氏液的烧杯中。洗净双手及用过的全部手术器械。再进行下面步骤。 图 1-3 剥掉后背及后肢皮肤 (4) 分离两腿 用镊子夹住脊柱将标本提起,背面朝上,剪去向上突起的尾骨。然后沿正中线用粗剪刀将脊柱和耻骨联合中央剪开分为两半(勿损伤神经)。将标本浸入盛有任氏液的培养皿内。 (5) 制作坐骨神经-腓神经标本 取一腿放置蛙板中央,腹侧向上用蛙钉固定。用玻璃分针沿脊柱侧游离坐骨神经,并于近脊柱端穿线结扎。再将标本背面朝上放置,剪去梨状肌及其附近的结缔组织。循坐骨神经沟找出坐骨神经大腿段,用玻璃分针小心剥离,然后从脊柱端将坐骨神经剪断,手持结扎线轻轻提起,剪断坐骨神经所有分支,游离神经至腘窝处。坐骨神经在腘窝上方分为胫神经和腓神经两支。在分叉下剪断内侧的胫神经。沿腓肠肌沟分离腓神经直至足部,用线结扎并剪断。也可剪断腓神经而分离胫神经,制备坐骨神经-胫神经标本。将制备好的神经标本浸泡在任氏液中数分钟,待其兴奋性稳定后开始实验。 2. 标本安装和仪器连接 按图 2-1所示用导线连接实验仪器。在刺激输出端口上连接一对刺激电极,刺激电极的正极连接S1,负极连接S2,地线接地。两对引导电极的正极分别连接在R1和R3上,负极分别连接在R2和R4上,引导电极的另一端分别连接在微机的1、2通道。将标本盒内所有电极用浸有任氏液的棉球擦拭,从任氏液中取出坐骨神经-腓神经标本,置于标本盒内各电极上,粗的一端放在刺激电极上,细的一端放在记录电极上。打开计算机,启动BL-420E生物机能实验系统。 图 2-1 神经干动作电位及其传导速度测定装置示意图
3. 实验观察 (1) 观察不同刺激强度对神经干动作电位的影响 由菜单选取“实验项目-肌肉神经实验-神经干动作电位的引导”。启动刺激器,刺激强度从零开始逐渐增加,当刺激强度增加到刚能引起微小动作电位时,此刺激强度称为阈强度(threshold intensity),记录其数值。继续增加刺激强度,观察神经干动作电位是否也相应增加大。当刺激强度引起的动作电位的幅值达最大时,该刺激强度称为最大刺激强度,记录其数值。 (2) 观察双向动作电位 ① 动作电位幅值不再增大时,记录潜伏期(latency period),从刺激伪迹到动作电位起始点的时间)、双相动作电位上下相的幅度和整个动作电位持续的时间。 ② 将神经干标本放置方向倒换后,观察动作电位的变化。 ③ 把引导电极R1和R2调换位置后,观察动作电位的变化。 (3) 动作电位传导速度的测定 点击“实验项目-肌肉神经实验-神经干传导速度的测定”,输入R1与R3的距离(d)。选取1、2通道,调节各参数,使1、2通道的波形处于最佳。计算机会计算出两个动作电位的潜伏期差值(t2-t1)。根据v=d/t2-t1,即可计算出神经干动作电位的传导速度。 (4) 观察单向动作电位 在记录电极R1、R2之间,用小镊子夹伤神经干或用药物(如普鲁卡因)阻断,可见动作电位的第二相消失,变为单相动作电位。记录单相动作电位的潜伏期、持续时间和幅值。 |