凝胶电泳迁移率实验(electrophoretic mobility shift assays, EMSA)按YANG等[8]的方法提取肝组织的核蛋白,-70℃冻存备用,用考马斯亮蓝蛋白浓度检测试剂盒(南京建成生物工程研究所产品)测定蛋白浓度。结合NFκB的寡核苷酸探针(上海生工生物工程技术有限公司合成)双链核苷酸序列为5′AGT TGA GGG GAC TTT CCC AGG C3′,3′TCA ACT CCC CTG AAA GGG TCC G5′,以γ32PATP(北京福瑞生物工程公司产品)进行探针标记。室温下将2μL 5×凝胶滞留结合缓冲液、核蛋白10μg、鲑精DNA(4g/L)1μL混匀,10min后加入γ32PATP标记的NFκB探针2μL,反应30min后加入5×上样缓冲液2μL,60g/L非变性聚丙烯酰胺凝胶恒压电泳2h(110V)后,-70℃放射自显影6h。X光片置于BIORAD凝胶图象分析系统测定NFκB活性值(A值)来表示提取物中NFκB的DNA结合活性。NFκB活性值(A)=滞后带吸光度值(A)×滞后带面积值(S)。
1.3.2 冷保存期肝组织TNFα和IL1β的测定
采用免疫组化SABC法在石蜡切片上测定TNFα和IL1β的表达。TNFα和IL1β主要定位于细胞质内,表现为胞质黄染或棕黄色颗粒。免疫组化染色结果判定参照MATTERN的方法[9]。阳性染色深度:未见染色为0,轻度染色(染成浅黄色)为1,中度染色(染成棕黄色)为2,深度染色(染成棕褐色)为3;阳性细胞百分比:未见染色为0,染色细胞<25%为1,25%~50%为2,>50%为3。将这两方面得分相加,得分0~2分判为阴性表达,>2分(3~6)判为阳性表达。每组10例标本,每例标本随机选择10个高倍视野,记数100个细胞判定此例标本的表达为阳性或阴性,并计算阳性表达率。
1.3.3 TUNEL法检测肝细胞凋亡
肝组织石蜡切片厚4μm,采用末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记法(TUNEL)检测。按DeadEndTM TUNEL检测试剂盒(Promage, USA)操作说明进行操作。阳性细胞表现为细胞核呈棕黄色着色。每张切片光镜(20×15)观察10×500个细胞,计算每100个细胞中平均阳性细胞数,即凋亡指数(apoptosis index, AI)。
1.3.4 再灌注后血清TNFα、IL1β的测定
血清TNFα、IL1β采用双抗体夹心ELISA法,试剂盒购自晶美生物工程公司,采用德国FLUO star OPTIMA高通量微板测试系统测定。
1.3.5 再灌注后血清ALT、AST的检测
采用日立生化分析仪7160,进行血清ALT、AST的检测。
1.4 统计学处理
采用SPSS13.0软件,实验数据以均数±标准差(±s)表示。各组样本间均数用单因素方差分析比较,各组间阳性率用四格表的确切概率法比较。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 大鼠肝移植模型的制备情况
正式实验共进行大鼠肝移植手术30例,手术死亡3例,成功率90%。供体手术(18.6±5.2)min,供肝修整(8.5±3)min;受体手术(30.2±6.4)min,无肝期(15.5±3.3)min。门静脉开放后,肝脏颜色迅速变红,并可以看到少量金黄色胆汁分泌。3h时存活受体大鼠可自行活动、饮水,满足获取标本需要。
2.2 肝组织冷缺血期和再灌注期NFκB的测定结果
NFκB在B组和C组冷保存期均呈现不同程度活化,组间比较无统计学差异(P>0.05)。D组同其他冷保存组相比,NFκB活性显著增高(P<0.05)。再灌注后,B组、C组和D组NFκB活性均较假手术组活性水平增高(P<0.05)。随着冷保存时间的延长,NFκB活性增高(P<0.05,表1、图1)。表1 不同冷保存时间组移植肝NFκB的活性(略)
2.3 冷保存期肝组织TNFα、IL1β的测定结果
随着冷保存时间的延长,TNFα和IL1β在肝组织中的阳性表达率逐渐升高,D组TNFα和IL1β的阳性表达率较A、B、C组明显升高(P<0.05,表2)。表2 不同冷保存时间肝组织TNFα及IL1β的表达(略)
2.4 再灌注期血清TNFα、IL1β及ALT、AST的测定结果医.学.全.在.线www.lindalemus.com
再灌注后,B、C、D组TNFα和IL1β均较假手术组明显升高(P<0.05),而且随着冷保存时间延长,两种细胞因子活性均升高(P<0.05)。随着冷保存时间的延长,再灌注后血清转氨酶水平升高,组间比较差异有统计学意义(P<0.05,表3)。表3 再灌注后血清TNFα、IL1β、ALT、AST水平和细胞凋亡指数(AI)的变化(略)
2.5 再灌注后肝细胞的凋亡情况
凋亡细胞在TUNEL染色中显示为棕色或褐色小点。A组为正常肝组织,凋亡细胞罕见;随着冷保存时间的延长,移植肝再灌注后凋亡细胞在B、C、D组中表达逐渐增多,在中央静脉周围分布较多。经统计后得出:随着冷保存时间的延长AI值逐渐升高,B、C 、D组AI值均较A组明显升高(P<0.05),而且组间比较差异有统计学意义(P<0.05,表3、图2)。
3 讨 论
NFκB是一类能与多种基因的启动子或增强子κB位点发生特异性结合并启动基因转录的蛋白质。胞质中的NFκB/IκB三聚体,可被TNFα、IL1β、活性氧等多种细胞外刺激信号激活,继而NFκB活化入核,与靶基因特异性序列结合并启动转录。转录产物包括黏附分子、趋化因子和细胞因子(TNFα、IL1β)等,这些炎性介质参与P/RI的病理过程[10]。