胃肠道产生的分泌性IgA（SIgA)在其粘膜表面形成重要的免疫保护层能防止抗原性物质进入粘膜，对局部炎症和肿瘤的发生发展起重要作用，也是近年来研究局部粘膜免疫反应的重要课题。
一、SIgA合成及其功能
人体内主要含有两种形式IgA。一种为s IgA单体，主要存在血清中，多来自脾脏、骨髓和肠系膜淋巴细胞的浆细胞。另一种是与分泌成分（secretory component, SC)结合的二聚体，即SIgA，沉降系数为11S，主要存在唾液、初乳及胃肠道等分泌液中。成人肠道每天能分泌3gSIgA。目前多认为胃肠道是s IgA的中枢器官。SIgA由SC、J链和二个IgA单体组成，形成过程包括：SC的合成、J链和IgA合成、IgA与SC结合和SIgA分泌。SC是分子量为83000dalton左右的糖蛋白，由549～558个氨基酸和20%糖组成，其转录基因在上皮细胞的第1对染色体上。我们用免疫细胞化学染色证实SC主要分布在分泌性腺上皮细胞基底侧膜及游离腔面的胞浆内。杯状细胞含SC很少。SC作为免疫球蛋白的受体在SIgA的合成中起重要作用。目前已经证实SC与胃肠道固有层IgA产生细胞分泌的二聚体和J链形成二硫键。虽然40%IgG和IgD产生细胞也含有J链，但很快被溶解，故SC不能与IgG与IgD相结合。SC能与IgM五聚体结合，但结构不稳定，易被消化酶破坏。SC与IgA结合及SIgA分泌过程是近年来研究的重点课题。SC作为特异性受体位于上皮细胞膜上，其膜外部分（最外层100个氨基酸残基，即SC1)非共价键与J链和IgA的α链可变区（Cα3)结合，SC紧靠细胞膜部分（SC5)与IgA二聚体的另一条链α链（Cα2)形成二硫键。结合的SIgA通过细胞吞饮作用（pinocytosis)进入胞浆，在上皮细胞腔面释放，近年的研究表明，小白鼠的肝细胞和人胆管上皮细胞也能合成SC。人胆汁中含有IgA单体多来自血液，少部分来自门脉区及胆管内皮细胞下浆细胞。有趣的是有人发现慢性肝硬化患者周围血B淋巴细胞也能产生IgA二聚体，其机理还不清楚。
SIgA分布在粘膜表面，能封闭细菌和病毒等抗原表面及其受体结合部位或与之凝集成团状，阻止病毒和细菌和粘附。SIgA与相应抗原结合还可激活补体的替代途径，造成抗原溶解，近年来也有人发出IgA也能通过ADCC发挥细胞毒作用。有人发现先天性缺乏SIgA的病人恶性肿瘤的发病率比正常人高20～50倍。小肠之所以很少发生恶性肿瘤，粘膜中含85%以上的IgA产生细胞是重要因素之一。因此，深入研究SIgA与消化道炎症，感染和肿瘤发生发展的关系有临床实用价值。
二、对比免疫荧光染色
1．染色特点
（1)要进行SC和IgA组织定位，必须有相应特异抗血清。SC抗血清国内没有生产。国内商品IgA抗血清的抗原多来自人乳中的SIgA，具有双重抗原性（SC和IgA)，不能特异进行IgA组织定位，最好采用抗人α-重链抗血清。
（2)SC是糖蛋白，IgA是免疫球蛋白。在组织处理上虽然有人提出用冷冻切片或福尔马林固定胰酶消化的方法，我们的体会用冷酒精直接固定法既简单又方便。
（3)SC和IgA除一部分在细胞内，也可以分布于间质和粘膜表面。为了提高特异性，除了染色前用琼脂扩散、对照试验、吸收试验和抑制试验等方法检验抗体的特异性和敏感性外，可采用伊文氏蓝作对比染色。伊文氏蓝肉眼下是蓝色，在荧光镜下是红色，混合染色后能衬托FITC的绿色荧光，同时抑制非特异性荧光，不影响抗原抗体结合。如果特异性染色后再加伊文氏蓝，比较费时间，效果不一定最佳。先用伊文氏蓝染组织切片，再进行特异性抗体染色能抑制抗原抗体结合，不宜使用。
2．染色步骤
（1)组织加工、固定及切片与抗体产生细胞研究（不需PBS浸洗)相同。先做HE染色，选纵向连续切片，脱蜡后在4℃PBS中浸洗3～5min，过一次蒸馏水后风干待染。
（2)用伊文氏蓝PBS稀释FITC标记的SC和IgA抗体，加在连续组织切片上，放入湿盒，37℃温箱放置45min。
（3)取出切片，用BPS浸洗3次，每次5～10min。
（4)过一次蒸馏水后风干，50%甘油封片，荧光显微镜观察。
3．结果判断和分析 荧光镜下组织切片底色为红色荧光，SC和IgA呈绿色荧光。IgA和SC主要分布在分泌性腺体腔面、上皮细胞侧膜及基底部，IgA还分布在间质及固有层IgA产生细胞浆内。可根据荧光强度进行SC和IgA半定量分析，也可以用荧光光度计或数字减影技术进行准确定量。
