（四)DNA探针标记常用试剂的配制
（1)10 ×缺口平移缓冲液：200mmol/l Tris-HCl,pH7.4含50mmol/L MgCl2;100mmol/Lβ-巯基乙醇、1mg/ml BSA。
（2)缺口平移反应终止液：200mmol/L NaCl;10mmol/l Tris-HCl,pH7.4; 11mmol/L EDTA; 0.5% SDS。
（3)DNaseⅠ:干粉状DNaseⅠ(2000～3000u/mg)溶于20mmol/l Tris-HCl, pH7.5中（1mg/ml),10μl分装，-20℃保存一年。
（4)10×DNA聚合酶Ⅰ（Klenow片段)缓冲液：500mmol/l Tris-HCl,pH6.6;100mmol/L Mg－Cl2;10mmol/L DTT;0.5mg BSA。
（5)10×激酶缓冲液：500mmol/L Tris-HCl,pH7.4,50mmol/L MgCl2;20mmol/L DTT; 1.0mmol/L亚精胺。
（6)10×随机引物标记缓冲液；500mmol/l Tris-HCl,pH6.6;100mmol/L MgCl2;10mmol/L β-巯基乙醇；500μg/ml BSA。
（7)1×加尾缓冲液：100mmol/L二甲胂化钾，pH7.0,1mmol/l CoCl2 0.2mmol/L DTT。
（8)1mol/L MgCl2:MgCl2 47.60g溶于500ml水中，100ml分装，高压灭菌，室温保存。
（9)0.25mol/L EDTA(Ph8.0):EDTA 52.02g溶于400ml水中，调pH至8.0，加水至500ml，100ml分装，高压灭菌，室温保存。
（10)4mol/L醋酸钠：取无水醋酸钠82g溶于200ml水中，用醋酸调pH至6.5，加水至250ml，高压灭菌，或0.45μm膜过滤，室温保存。
（11)10% SDS：10g SDS（十二烷基硫酸钠)溶于50ml水中，加水至100ml，分装后室温保存。
（12)20×SSC：取NaCl 175.3g;柠檬酸钠88.2g;加水至1000ml，用10mol/l NaOH调pH至7.0；高压灭菌，室温保存。
（13)无菌水：100ml去离子水或双蒸水，分装，高压灭菌，室温保存，开瓶后仅限一周使用。
（14)10×激酶缓冲液：500mmol/L Tris-HCl,pH7.4;100mmol/L MgCl2;50mmol/l DTT;10mmol/L亚精胺（非必需)。
（15)T4多聚核苷酸激酶：10u/μl，保存在甘油中，-20℃。
（16)TE缓冲液（Tris/EDTA)：Tris,10mmol/l pH7.4(0.5ml 2mol/L贮存液)，1.0mmol/l ED－TA,pH8.0(20μl 0.5mol/L)贮存液，加水至100ml，室温保存。
（17)2mol/L Tris-HCl pH7.4:Tris242.2g溶于850ml，加浓HCl 75ml ,边加边缓慢搅动，至pH7.4,于加水至1000ml。
（18)1mol/L DTT(二硫苏糖醇)：3.0g DTT溶于20ml水中，分装，于-20℃贮存。
（19)0.5mol/L EDTA（乙二胺四乙酸二钠盐)：在烧杯中先加入300ml水，加入93.5g EDTA－Na2·2H2O,充分混匀，加10mol/l NaOH调pH至8.0,加水至500ml。
（20)10mol/L NaOH：200g NaOH溶于450ml水中，混匀，再加水至500ml。
（21)5mol/L NaCl：292.25g NaCl,加水至1000ml。
（22)1mol/L HCl：加86.2ml浓盐酸至913.8ml水中。
（23)1mol/L CaCl2：147g CaCl2：2H2O,溶于1000ml水中,高压灭菌,室温保存。
三、固定剂
进行原位杂交的组织或细胞标本常需经固定处理。尽管许多化学物质对组织/细胞有固定作用，但核酸原位杂交的理想固定液应具备如下特点：①能很好地保持组织细胞的状态；②对核酸无抽提、修饰及降解作用；③不改变被检核酸分子在组织细胞内的定位；④对核酸及探针的杂交过程无阻碍作用；⑤固定液本身对杂交信号无遮蔽、掩盖作用，如不使本底增加等；⑥理化性质稳定、价格低廉。
1．4%多聚甲醛（Paraformaldehyde,PFA)
配法：称取40g PFA溶于装有500ml DEPC水的玻璃容器（烧杯或烧瓶)中，持续加热磁力搅拌至60～65℃，使成乳白色悬液。用1.0mol/L的NaOH值至7.0，使呈清亮状（滴加)，再加入约500ml 2×PBS※，充分混匀（在冰浴或冷水浴中)，可再检测一下pH，过滤后定容至1000ml，室温或4℃保存备用。
注意：①配制时应在通风条件下操作，并避免接触皮肤和吸入（戴手套及口罩)，因PFA有较强的固定作用及毒性，对粘膜及皮肤有固定及毒性，刺激作用；②加热时，温度不宜过高，常为60～65℃，否则，PFA降解失效；③配制好的PFA虽可存放一定时间，但过久的液体，固定效果下降，建议尽早使用。
附：固定液用PBS的配制：
配法：按上述比例称取试剂，溶于DEPC水（也可用蒸馏水加DEPC)500～800ml中，过滤后，加水定容至1000ml，高压灭菌。通常配制成10×PBS的储备液，2×PBS和1×PBS可用DEPC水稀释获得。
除用DEPC水配制PFA外，也有用灭菌蒸馏水或经DEPC处理的0.01～0.1mol/L的PBS配制的，方法及注意事项同上。
4% PFA是目前原位杂交组织化学技术中最常用的固定液，它能较好地保持组织及细胞内的RNA，同时对形态保持也较好。通常组织块固定4～12h，载片固定时间在10～15min以内，RNA含量较为恒定。过度延长固定时间会引起细胞内生物大分子的过度交联，影响探针的穿透力，降低杂交效率。
2．甲醛
①10%甲醛（Formaldehyde,FA)
量取二者充分混合而可。较适于检测RNA的组织及细胞固定，也可用于新鲜冰片切片后固定。
②10%福尔马林试剂：
较适于固定细胞。
③10%中性福尔马林
市售甲醛 100ml
Na2HPO4 4g
NaH2PO4 6.5g
DEPC水 ～1000ml
常用于石蜡样品切片的固定。
10%的甲醛由于有促进DNA双链分子交联的作用，干扰DNA变性，故不适于DNA杂交。在组织或细胞原位杂交中，可通过使用含50%甲酰胺的杂交液使DNA变性解链而解决。这类固定液在DNA/RNA杂交中有较好的效果。
3．4%戊二醛效果较40%差。
4．0.1%戊二醛常用于固定组织，适于新鲜组织冰冻切片及石蜡切片的后固定，常用于检测DNA的原位组织杂交方法。
5．乙醇/醋酸（或冰醋酸)将乙醇与醋酸按3：1的体积比充分混合即可。该液较适于固定细胞的原位杂交，尤其检测DNA时。
乙醇/醋酸虽广泛应用于原位杂交中，但RNA保留较差，可本底很低，即背景染色淡。
6．甲醇/醋酸（3：1)用前按体积比3：1比例充分混合即可。
7．甲醇/丙酮（1：1)适于培养细胞的原位杂交技术。
8．4%多聚甲醇-0.5%～1%戊二醛溶液在pH7.4磷酸缓冲液中，用于免疫电镜样品固定。
