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您现在的位置: 医学全在线 > 执业兽医 > 养猪 > 养猪问答 > 正文:猪圆环病毒病的诊断与控制措施养猪免费问病诊断治疗预防
    

养猪免费问病:猪圆环病毒病的诊断与控制措施

猪圆环病毒病的诊断与控制措施
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本文综述了猪圆环病毒的特性、致病性,猪圆环病毒病的流行病学、临床症状、病理变化、诊断等的研究进展,结合中国实际提出了本病的防制对策。  PCV病毒在兽医临床可致猪发生:猪断奶后多系统衰竭综合征(PMWS)、猪间质性肺炎(IP)、猪皮炎和肾病综合征(PDNS)以及由圆环病毒引起的母猪繁殖障碍。  1 病原学研究进展  1.1 病原分类  PCV在分类学上属于新的DNA圆环病毒科、圆环病毒属,即小环状病毒属,这是由国际病毒分类委员会在第六次学术报告会上命名的。PCV与鸡传染性贫血病毒(CAV)、鹦鹉喙羽病毒(PBFDV)及几种植物病毒共同划归环病毒科(Circoviridae)。  1.2 病原结构  PCV为无囊膜的正20面体,直径17~22nm,含有1.76~2.3kb的单链环状DNA,CsCl浮密度1.33-1.34,相对分子质量5.8×102,沉降系数为52S。在长度为1758bp的核苷酸序列中,具有4个开放阅读框架(ORF),即Replicase V1(35700)和V2(9800),Capsid C1(27500)和C2(23200)。衣壳蛋白为1条多肽链,其分子量为3600Da。Brina等主张根据PCV致病性、抗原性及核苷酸序列将PCV分为PCV-1和PCV-2两个型。病毒基因组是1条共价闭合的单股负链环状DNA,PCV基因序列已经明确。PCV-1型无致病性,包括PCV-PK15及其它无致病性的分离株;PCV-2有致病性,目前归入PCV-2的有分离自美洲、欧洲等地的PMWS病料中分离的一些毒株。ORF1编码与病毒复制相关的Rep蛋白;ORF2编码的蛋白为病毒的主要结构蛋白,具有较好的免疫原性,是研制基因工程苗的首选基因。  1.3 病原特性  北爱尔兰学者Allan等(1994)报道PCV对酸性环境(PH3)、氯仿或者高温(56℃和70℃)有抵抗作用。PCV在原代胎猪肾细胞、恒河猴肾细胞、BHK-21细胞上不生长,Tischer等认为PCV能在一些来源于猪的细胞中复制,并且依赖细胞周期S期表达的细胞蛋白。Tischer等发现在PK-15细胞培养物中加入d-氨基葡萄糖,可促进感染细胞内形成包涵体,提高病毒复制,使含有PCV抗原的细胞数提高30%。Allan等(1994)证明了PCV在源于猪骨髓、外周血液、肺洗出物和淋巴结的单核细胞/巨嗜细胞中的复制。用感染PCV的PK-15细胞接种猪,可以回收到病毒,根据病毒抗原的出现及抗体的产生,表明猪感染了PCV,但不出现临床症状和病变,说明来源于PK-15细胞的PCV是非致病性的,即PCV-1。1997年,在加拿大、西班牙及法国相继报道了PMWS,且患病猪病变部位免疫组织化学染色的PCV抗原,通过原位杂交检出了PCV核酸。1998年,加拿大、美国、法国、西班牙、丹麦、北爱尔兰等国也相继从PMWS患猪分离出新的PCV,即PCV-2。利用这些患猪的组织乳剂或细胞培养分离继代的病毒接种于仔猪,接种猪出现PMWS的特征病变。  1.4 病原致病性  PCV在临床上主要引起猪的传染性先天性震颤和断乳后全身消耗性衰竭综合症(PMWS)。PCV-2是PMWS的主要病因,但不是唯一的病原。用PCV感染材料经鼻接种3d无菌猪,5周后除检出PCV-2外,还检出猪小RNA病毒,提示PMWS的病因与PCV-2和猪小RNA病毒有关。用PCV-2和猪小RNA病毒的混合物经鼻接种于1~2d的未吸吮初乳的仔猪,仔猪表现食欲不振、不愿运动、体重减轻和嗜睡等症状,部分发生死亡。21~26d后剖检,病变与临床上的PMWS病例相似,并从各器官检出PCV-2和猪小RNA病毒。  2 流行病学与临床症状  2.1 流行病学  PCV主要易感动物是猪,但Tischer等报道,在人、牛和鼠血清中也存在能与PCV发生群特异性结合的低水平抗体。PCV经口、呼吸道感染不同日龄的猪,少数怀孕母猪感染PCV后,经胎盘垂直感染给仔猪。感染的猪可通过鼻液、粪便等废物排出病毒。PCV分布广泛。在德国,屠宰猪和2~3岁繁殖猪血清抗体阳性率达85%。在加拿大,猪血清阳性率在26%~55%。在英国随机采集的猪血清中,阳性率为86%。在爱尔兰,猪血清抗体阳性率达92%。Allan等(1994)对荷兰两群仔猪血清学研究表明,仔猪抗PCV母源抗体在出生后8~9周消失,在13~15周时血清抗体又重新出现,说明仔猪在11~13周受到PCV感染。PMWS可见于5~16周龄的猪,但最常见于6~8周龄。猪群患病率为3%~50%,死亡率在8%~35%。本病发展缓慢,猪群一次发病可持续12~18个月。我国学者王永康在上海郊区观察发现,猪皮炎和肾病综合征的发病率可达11%,死亡率达到40%。此外,本病常与集约化生产方式有关,饲养管理不善、环境恶劣、饲养密度过大、应激、不同年龄和不同来源的猪编群等,均可诱发本病。R .Larochelle等(2002)报道PCV2病毒可间隙性地自公猪精液中排出,感染公猪的精液可看作为一种潜在的PCV2病毒来源。Kiupel M等(2000)报道,被PCV2感染的小鼠能否排毒尚不清楚,但小鼠的先天性及出生后的感染现象说明,可能由于野生小鼠作为PCV2的宿主或传媒的潜在危险及鼠群中感染的流行。  2.2 临床症状  2.2.1 断乳后全身多系统衰竭综合征 PMWS主要影响6-8周龄的猪,很少影响吮乳的猪。临床上表现为多系统进行性功能衰弱为特征的症状,生长发育不良,渐进性消瘦,体重减轻,皮肤与可视粘膜苍白或黄疸,贫血,肌肉萎缩、衰弱无力,呼吸困难、呼吸过速,一些不常见的症状有下痢、咳嗽和中枢神经系统紊乱。Harding(1997)报道,在一些猪群中,断奶猪的发病率和死亡率之比为50%。一般而言,患病猪临床表现为发热、精神不振、被毛粗乱、皮肤苍白、进行性消瘦、发育障碍,而且表现以咳嗽、喷嚏、呼吸加快及呼吸困难为特征的呼吸器官障碍。体表淋巴结,特别是腹股沟淋巴结肿大,部分病例可见皮肤、可视粘膜黄疸,下痢,嗜睡。再一个特征就是猪群的死亡率增加。约20%的猪咳嗽、喷嚏、呼吸困难,死亡率约为8%~35%,10~20%猪皮肤和可视粘膜可见黄疸。由于细菌、病毒的二重感染,常常使PMWS的症状复杂化、严重化。  2.2.2 传染性先天性震颤 先天性震颤的临床变化很大,其震颤为从轻度到重度。在出生后第一周,严重的震颤可因不能吃奶而死亡,活一周的仔猪可以存活下来,但多数在3周时间恢复。震颤为双侧,影响骨骼肌肉,当卧下或睡觉时震颤消失,外界刺激可引发或加重震颤,如声音或温度刺激;有的在整个生长和发育期间都不断发生震颤。主要是母猪在怀孕阶段感染了病毒。Allan等(1995)认为,PCV病毒通过胎盘感染胎儿的可能性很小,或者感染发生在胎儿免疫功能形成以前。Gustafson和Kanit(1974)曾报道母猪在不同的怀孕阶段感染类似PCV病毒时,可引起震颤发生。  3 病理变化  3.1 断乳后全身多系统衰竭综合征  Clark(1997)和Daft等(1996)描述了PMWS的大体和组织病变。患PMWS猪的尸体营养状况差,表现出不同程度的肌肉消耗,皮肤中度苍白,20%的病例呈黄疸。剖检变化主要表现多种组织器官的广泛性病理损伤,最显著的变化是全身淋巴结,特别是腹股沟浅淋巴结、肠系膜淋巴结、气管支气管淋巴结及下颌淋巴结肿大2~5倍,有时可达10倍。切面硬度增大,可见均匀的白色。集合淋巴小结也肿大。发生细菌二重感染的,则淋巴结可见炎症和化脓病变,使病变复杂化。  所有病例几乎都可以见到肺萎缩不全,重量和硬度增加,部分病例尖叶有固质化致密的病灶,肺弥散性病变,肺表面呈花斑状,灰棕色肺叶与正常的黄到粉红肺叶相间。在严重病例,可以观察到黑红或棕色的肺泡出血斑。  半数病例的肝脏肉眼观察呈不同程度的花斑状,为轻度到中度的肝萎缩。肝小叶间结缔组织明显,严重病例的肝小叶,结缔组织非常明显。脾脏增大,切面呈肉状,无充血。半数病例的肾脏被膜下呈现可见的白色灶,所有可见病变的肾脏都肿大、白色,有的因水肿可达正常的5倍。  自然感染病例中,约有半数猪在胃无腺部形成溃疡。少数病例还见到皮肤出血和坏死、肾衰竭、浆液纤维素性多发性浆液。部分病例回肠可出现花斑状区域,结肠粘膜可能充血或出现瘀血斑。  显微病变可见淋巴细胞-组织细胞浸润,在巨噬细胞、淋巴细胞、内皮细胞、上皮细胞内形成包涵体。在小肠固有层、腹股沟淋巴结内形成合胞体。  3.2 先天性震颤  唯一有关先天性震颤的病理学变化为脊髓髓磷脂沉着迟缓。Lamar(1971)报道了感染1~13日龄脊髓神经缺乏髓磷脂化。先天性震颤的猪无肉眼变化。在脊髓细胞中未检测到PCV抗原,也未从这些组织中分离出病毒。  4 诊断  对PCV感染的诊断可以通过原代猪肾细胞或猪肾细胞株培养分离病毒,利用免疫染色确定病毒的存在。检测到PCV抗体水平提高也说明最近受到感染。对先天性震颤排除遗传性和化学原因引起的震颤外,可以通过临床症状进行诊断。  4.1 临床诊断  PMWS的临床症状具有特征性,有较高的诊断价值。Rosell等在有PMWS发病史的养猪场挑选出具有发育不良、皮肤苍白及腹股沟淋巴结肿大症状的15头仔猪,进行病理检查、PCV抗原及核酸检验,结果所有仔猪都患有PMWS。传染性先天性震颤的震颤为从轻度到重度。在出生后第一周,严重的震颤可因不能吃奶而死亡,活一周的仔猪可以存活下来,但多数在3周时间恢复。震颤为双侧,影响骨骼肌肉,当卧下或睡觉时震颤消失,外界刺激可引发或加重震颤,如声音或温度刺激;有的在整个生长和发育期间都不断发生震颤。  4.2 病理学诊断  当发现全身淋巴结肿大,肺退化不全或形成固化、致密病灶时,应怀疑本病。病理组织学检查可见全身淋巴组织的淋巴细胞减少,单核吞噬细胞类细胞浸润及形成多核巨细胞,如在这些细胞中观察到嗜碱性或两性染色的细胞质内包涵体,则基本可以确诊。  4.3 病毒分离及电镜观察  将病料制成100g/L的组织悬液,加青霉素(100IU/ml)、链霉素(100ug/ml),4℃3000r/min离心20min,取上清液接种于Dulac细胞。接种后6h用300mmol/LD-葡萄糖胺37℃处理30min,再培养72~96h,将增殖病毒的细胞冻融3次,收集细胞病毒液,用细胞病毒液再接种细胞传代6次。第6代细胞病毒液反复冻融3次,按5g/L加Trition114,37℃处理30min,10000g离心30min,弃沉淀;将上清液加入盛有300g/L蔗糖垫的离心管中,15000g离心3h;弃上清,用0.01mmol/LpH8.0的TE缓冲液重悬并收集病毒,乙酸双氧铀负染色后电镜观察。  4.4 间接免疫过氧化物酶技术  将PK-15细胞在96孔微量培养板上长成单层后,加入10倍稀释的待检猪血清,作用一定时间后吸干洗涤,每孔加入50ul1000倍稀释的HRP标记的抗猪IgG,30℃孵育15min, 吸干洗涤后加入50ul底物溶液,然后,终止反应。用显微镜读取结果,如观察到棕色感染细胞即为阳性。  4.5 DNA原位杂交实验  用特异性核酸探针检测感染病料中的PCV。尤其在感染的淋巴结和肺脏组织中经常出现明显的杂交信号。  5 防制对策  5.1 实施严格的生物安全措施  Kiupel M等(2000)报道,PCV2病毒能够在BALB/C系小鼠中复制并产生轻微的病变,这种传染是直接的,能经过胎盘感染。相对于自然发生PMWS的猪及PCV2感染的猪而言,感染小鼠体内则没有那样广泛而严重的病理变化,通过胎盘感染PCV可复制出猪的生殖道先天性震颤A2病例。被PCV2感染的小鼠能否排毒尚不清楚,但小鼠的先天性及出生后的感染现象说明,可能由于野生小鼠作为PCV2的宿主或传媒的潜在危险及鼠群中感染的流行。因此要避免鼠、飞鸟及其它动物接近猪场。  5.2 加强良好的饲养管理  在国外,有人尝试使用血清疗法,在降低死亡率方面获得一定成功。具体做法是:采取PMWS猪场健康成年猪的血,抽出血清,每毫升加0.25mg蒽诺沙星或氧氟沙星或氟苯尼考,也可以按每毫升血清加入欧孢美诺或华西经典4万IU,混匀后分装冷冻保存,在仔猪出生7d后皮下注射3ml/头,有一定效果。但是,本病没有十分有效的治疗方法,抗生素对PMWS患猪无效。但抗生素(如附红散、百草圣等)和免疫增强药物(如黄芪多糖、流行针等)的使用以及良好的饲养管理有助于控制二重感染。良好的饲养管理主要包括:合适的饲养密度;良好的圈舍通风;减少环境应激;合理分群与混养;注意猪只引种;用高迪-HB按1:800兑水加强有效消毒等等。  5.3 有效预防和控制其它感染性疾病  G.W.Stevenson等(2000)报道,对新生仔猪接种PCV2,诱导了典型PMWS的肉眼损害和显微损害,但在接种后第7周仅表现轻微的临床症状。与此相反,接种含有PCV2和PRRSV的TH可在接种后13天产生严重的消耗性病症和典型的PMWS病损。有研究认为,PMWS、PDNS和IP三种由圆环病毒引起的病例中,病原都不是单一的,其中PCV2约占了90%以上,是主要的病原体,但PRRSV各占有60%左右,是主要的协同病原体。在PDNS中,细小病毒(PPV)占了30%。这说明,防止PCV和使其感染恶化的二重因子,特别是细菌、支原体及其它病毒侵入猪群加重病理损伤。  5.4 加强流行病学和发病机理的进一步研究  目前对本病的流行病学和致病机理还缺乏全面、系统的研究,因此很难提出对PCV有效的预防和控制感染的措施。  5.5 加强疫苗的研究开发  目前,尚没有疫苗,也没有实验性试用过。吴金花、布日额等(2003)建议:研究一整套完善的检测方法和技术体系,搞清楚PCV在我国的流行分布情况;其次是寻找致弱该病毒的有效方法来制备可行的疫苗或根据对PCV全序列的分析,克隆具有免疫原性的基因并进行表达,制备基因工程苗。  5.6 全面评估公共安全  Tischer等(1995)用电子显微镜对人尿进行检查时,发现了类似PCV的小球形粒子,此后对人、牛、鼠的血清进行PCV抗体检查,发现伴有原因不明发热的人抗体阳性率最高达30%,正常人为20%,牛约35%,鼠12%~69%。Nishizawa等(1997)从人输血后肝炎病例中分离出TT病毒也属于圆环病毒属;Nayar G P等(1999)、佐藤胜哉等(2000)分别报道了牛、感染圆环病毒。因此,对PCV作为一种人兽共患病病原进行危险性评估十分重要。
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做好疫苗接种,增强抵抗力
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